počet kópií DNA profily žalúdočných prekurzorov rakoviny lézií
abstraktné
pozadia
chromozómové nestability (CIN) je najrozšírenejší druh genómovej nestabilite nádorov žalúdka, ale jeho úloha v malígne transformácii žalúdočnej sliznice je stále nejasná , V tejto štúdii sme sa vydali skúmať, či sú dva morfologicky odlišné kategórie žalúdočných prekurzorov rakoviny lézií, tj črevnej typu a pyloric žliaz adenómy, by so sebou niesla rôzne vzory počet zmien DNA kópií, čo možno odráža odlišné genetické dráhy žalúdočnej karcinogenéze v týchto existujú dva typy adenóm.
Výsledky
Použitie 5K BAC array CGH platformy sme ukázali, že najčastejšou aberácie zdieľané žľazy, adenómy z 11. črevnej typu a 10 pyloric boli zisky chromozómov 9 (29%), 11 q ( 29%) a 20 (33%), a straty chromozómov 13q (48%), 6 (48%), 5 (43%) a 10 (33%). Medzi najčastejšie chyby v črevnej typu žalúdočné adenómy boli zisky z 11 q, 9q a 8 a straty z chromozómov 5q, 6, 10 a 13, zatiaľ čo v pylorických žľazy žalúdku adenómov Jednalo sa o zisky z chromozómu 20 a straty z 5q a 6. Avšak, neboli pozorované žiadne významné rozdiely medzi týmito dvoma typmi adenómy.
Záver
výsledky naznačujú, že zisky z chromozómov 8, 9q, 11 q a 20 a straty z chromozómov 5q, 6, 10 a 13, ktoré by mohli predstavovať skorý udalosti v žalúdku rakoviny. Tieto phenotypical subjekty, črevné typu a pyloric žliaz adenómy však nijako významne (P = 0,8) sa líši na úrovni DNA počtu kópií zmien.
Pozadie
žalúdka Rakovina je druhou najčastejšou malignitou na celom svete a prognóza tohto zhubného bujnenia aj naďalej veľmi nízka [1]. Žalúdočné výskyt rakoviny a úmrtnosť sa líši medzi rôznymi krajinami v rámci Európskej únie [2]. V Holandsku ho radí na piate najčastejšou príčinou úmrtí na rakovinu, s približne 2200 nových prípadov ročne [3]. Chirurgia s liečivým zámerom je liekom voľby vo vyspelých prípadov rakoviny žalúdka, pričom miestni endoskopická mucosectomy môže byť liečivá na začiatku rakoviny žalúdka. Detekcia a odstránenie žalúdočných novotvarov v ranom alebo dokonca premalignant štát prispeje k zníženiu úmrtí v dôsledku rakoviny žalúdka. Na dosiahnutie tohto cieľa sú potrebné lepšie testy pre včasné odhalenie rakoviny žalúdka, a lepším pochopením biológiu progresie rakoviny žalúdka je v tomto ohľade kľúčová.
Podľa modelu Correa, patogenézy črevnej typu adenokarcinóme žalúdka nasledovne jednou z ciest chronickej aktívnej gastritíde vzhľadom k Helicobacter pylori
infekcie, čo vedie k atrofii sliznice, črevnej metaplázia nasleduje intraepiteliálna neoplázia a nakoniec invazívne adenokarcinóm [4]. Genetická charakterizácia vzoriek tkanív v intraepiteliálna neoplázia fáze podstatne prispieť k nášmu chápaniu molekulárnej patogenézy rakoviny žalúdka. Avšak, tieto lézie sú detekované len zriedka, možno kvôli rýchlemu priebehu prostredníctvom tejto fáze k rakoviny, a sú zvyčajne prítomné iba v niektorých častiach biopsiou, bráni genómovej analýzy týchto lézií. Analýza alternatívnych prekurzorov lézií by preto, aspoň čiastočne, nahrádzať. Rozvoj rakoviny žalúdka cez fázu adenómy, aj keď menej časté, je taká alternatívna cesta. Tieto adenómy sú občas zistené počas gastroskopia a prítomné ako veľké lézie, ktoré histologicky ukazujú intra-epiteliálne neoplazmy, čo z nich robí vhodné pre genomické analýzy. Žalúdočné adenómy majú priamy malígneho potenciálu a predstavujú približne 20% všetkých epitelových polypov [5, 6]. Žalúdočné adenómy môžu mať klasické rúrkové, tubulovillous alebo klkov morfológiu s prevažne črevnej typu epitelu, ale môže tiež objaviť ako pyloric žľazy, adenómy [6]. Pyloric žliaz adenómy vyplývajú z hlbokých hlienovitá žliaz v žalúdku a sú silne pozitívne na mucín 6 [7, 8]. Značný počet žalúdočných adenómov už vykazujú progresiu do adenokarcinóm. Na prvý diagnóze okolo 30-40% všetkých pyloric žľazy, adenómy už vykazujú zameranie karcinómu [9, 10]. Pre črevnú typu adenómov je toto číslo nižšie a pohybuje od 28,5% u klkov adenómov a 29,4% pre tubulovillous adenómov typu iba 5,4% v trubkovom adenómov [11]. Obaja adenokarcinómy, ex črevnej typu adenómov a ex pyloric žľazy adenómov, ukazujú žľazovej štruktúry, na rozdiel od rozptyľovať typ rakoviny žalúdka.
Kľúčovým prvkom v patogenéze väčšiny karcinómov žalúdka, rovnako ako v mnohých iných solídnych nádorov, je chromozomálna nestabilita , čo má za následok ziskov a strát častí, alebo dokonca celých chromozómov [12]. Tieto chromozomálne zmeny môžu byť analyzované komparatívne genomická hybridizácia (CGH). Niektoré predchádzajúce štúdie zistili genetické zmeny v žalúdočnej adenómov použitie tejto techniky, pričom zisky na chromozóme 7 q, 8Q, 13q, 20Q a straty na chromozóme 5q 4p, 9p, 17p a 18q [13-16]. Hoci nezvyčajné a len pozorovali u adenómov s vysoko kvalitné intraepiteliálna neoplázia, majú vysokú úroveň amplifikácie bola zistená na chromozómoch 7 q, 8p, 13q, 17q a 20Q [13-16]. V žalúdku adenokarcinómov, dôsledne popísané chromozomálne aberácie sú zisky na chromozóme 3Q, 7P, 7 q, 8Q, 13q, 17q a 20Q a straty na chromozóme 5q 4Q ,, 6Q, 9P, 17p a 18q. amplifikácie na vysokej úrovni boli opakovane zistené na 7 q, 8p, 8 q, 17Q, 19q a 20Q [14, 17-23]. Napriek tomu, chromozomálne aberácie, alebo DNA počtu kópií sa zmení, nie sú jednotné v karcinómu žalúdka [24]. Podskupiny s rôznymi vzormi počtu kópií zmeny môžu byť rozpoznané, čo bolo preukázané, že je spojená s klinickým výsledkom i [25].
V tejto štúdii sme sa vydali študovať, či dvoch morfologicky odlišných kategórií rakoviny žalúdka prekurzorové lézie, tj črevnej typu a pyloric žliaz adenómy, by so sebou niesla rôzne vzory počet zmien DNA kópií, čo možno odráža odlišné genetické dráhy žalúdočnej karcinogenéze v oboch typov adenómy.
výsledky
počet kópií DNA zmeny boli pozorované u 10 z 11 intestinálneho typu adenómov a 9 z 10 žľaza adenómov pyloru. Priemerný počet chromozomálnych udalostí, definované ako ziskov a strát, na nádoru bol 6,0 (rozmedzie 0 až 18), a 2,9 (rozmedzie 0-14) zisky a 3,0 (rozmedzie 0-7) strát. V črevnej typu adenómov, priemerný počet chromozómových udalostí na nádor bol 6,5 (rozmedzie 0-18), z toho 3,4 (v rozmedzí 0-14) zisky a 3,1 (rozmedzie 0-7) straty, av pylorické žľazy adenómu priemer čísla boli 5,4 (rozmedzie 0-9), 2,4 (rozmedzie 0-7) a 3,0 (rozmedzie 0-7), resp.
v žalúdočnej adenómy črevnej typu, najčastejšie aberácie pozorované boli zisky z chromozómov 8, 9q a 11 q, a straty z chromozómov 5q, 6, 10 a 13. v štyroch adenómov (36,4%), zisk z chromozómu 11q23.3 bol pozorovaný so spoločnou oblasťou prekrytie 2,6 Mb. Zisk chromozómu 9q bola pozorovaná v štyroch adenómov (36,4%) s 12,6 Mb spoločné oblasti prekrytia lokalizovaný na chromozóme 9q33.1-q34.13. Zisk chromozóme 8 bola pozorovaná u troch adenómov (31%), z ktorých dve adenómov ukázal zosilnenie celého chromozómu 8, a tretí adenóm vykázala zisk chromozómu 8p-q22.3 s dodatočnou 28,7 Mb zisk na chromozóme 8q24.11 -qter. Zisky boli pozorované na chromozómoch 1, 3, 6p, 7, 11p, 12p, 13q, 16, 17, 19, 20 a 22q. Žiadna amplifikácie bolo dosiahnuté v adenómy črevnej typu.
Delécia na chromozóme 13 boli pozorované u siedmich črevnej typu adenómov (64%). Z nich päť ukázala 11,9 Mb deléciu chromozómu 13q21.2-21.33 s ďalším 7,7 Mb delécie na chromozóme 13q31.1-31.3. Ďalšie dva adenómy ukázali deléciu 16,6 MB 13q14.3-31. Delécie na chromozóme 6 bola pozorovaná u šiestich adenómov (55%), s prekrývajúce sa oblasťou 68,9 Mb umiestnených na 6cen-q22.1. Delécie chromozómu 5q bola pozorovaná v štyroch adenómov (36%) sa spoločnou oblasťou prekrytie lokalizovaný na chromozóme 5q22.1-q23.2. Okrem toho delécie celého chromozómu 10 bola pozorovaná v štyroch adenómov (36%). Ostatné straty pozorované u črevnej typu adenómov boli lokalizované na chromozómoch 8Q, 9P, 10, 12 q, 20Q a 21. prehľad o všetkých číselných DNA kópie aberácií v adenómov črevnej typu je uvedený v tabuľke 1.Table 1 Prehľad DNA počet kópií sa zmení v 11 črevnej typu adenómov
chromozómy | sprievodné klony | | nádor číslo zisky strát veľkosti segment (Mb) Začiatok Koniec 1 1p-p36.11 26,68 RP11-465B22 RP1-159A19 5q13.2-Q23 0,2 55,26 RP11-115I6 CTB-1054G2 6p21.33-p21.1 13.78 RP11-346K8 RP11-227E22 6p21.1 -q16.1 52,05 RP11-89I17 RP3-393D12 9q33.1-34.2 17,32 RP11-27I1 RP11-417A4 11q23.3 4,80 RP11-4N9 RP11-730K11 13q21.1-q31.3 39,63 RP11-200F15 RP11-62D23 2 1p -1p33 46,90 RP11-465B22 RP11-330M19 6p21.33-p21.1 14,12 RP11-346K8 RP11-121G20 6p21.1 -q16.2 54,91 RP11-554O14 RP11-79G15 8P-q22.3 105,67 GS1-77L23 RP11-200A13 8q24.11 -qter 28,65 RP11-278L8 RP5-1056B24 9q33.1-q34.2 13,63 RP11-85O21 RP11-417A4 11p11.2 -q13.5 31,69 RP11-58K22 RP11-30J7 11q23.3 2,62 RP11-4N9 RP11-62A14 12q13.11-Q14 0,1 10,57 RP11-493L12 RP11-571M6 13q21.1-q21.33 18,24 RP11-200F15 RP11-335N6 13q31.1 -q31.3 12,49 RP11-533P8 RP11-62D23 16p13.3-Q21 57,26 RP11-243K18 RP11-405F3 16q21-q22 0,1 5,97 RP11-105C20 RP11-298C15 16q22.1-q24.3 22,46 RP11-63M22 CTC-240G10 17 81,24 GS1-68F18 RP11-567O16 19 61,01 CTB-1031C16 GS1-1129C9 20q11.21-q11.23 5.09 RP3-324O17 RP5-977B1 20q13.12-qter 19,60 RP1-138B7 CTB81F12 Sims 3 - - 4 6p21.1 3,32 RP11-79J5 RP11-121G20 6p12.3-q22.1 76,38 RP11-79G12 RP11-59D10 7 156,89 RP11-510K8 CTB-3K23 8q22.3-q23.3 9,69 RP11-142M8 RP11-261F23 9q33.1-Q34 0,13 12,58 RP11-55P21 RP11-83N9 11q23.3 3,04 RP11-4N9 RP11-8K10 13q21.2-q21.33 17,05 RP11-240M20 RP11-77P3 13q31.1-q31.3 11,68 RP11-400M8 RP11-100A3 16q23.2-Q24 0,3 8,92 RP11-303E16 RP4-597G12 20p-q13.2 53,40 CTB-106I1 RP5-1162C3 20q13.31-qter 8,06 RP5-1167H4 CTB-81F12 22q 33,72 XX-P8708 CTB-99K24 5 12q24.31-qter 11,75 RP11-322N7 RP11-1K22 6 Sims 3 193,37 RP11-299N3 RP11-279P10 6cen-q24.1 88.49 RP11-91E17 RP11-86O4 7 156,09 RP11-510K8 RP11-518I12 8 144,26 RP11-91J19 RP5 -1118A7 13q21.1-q21.33 11,86 RP11-640E11 RP11-452P23 13q31.1-q31.3 9,62 RP11-400M8 RP11-306O1 20q13.2-q13.31 1,41 RP11-212M6 RP4-586J11 7 5q21.1-qter 80.52 CTC -1564E20 RP11-281O15 10 132,19 RP11-29A19 RP11-45A17 13q21.33-31.1 8,76 RP11-209P2 RP11 -470M1 8 5q22.1-q23.2 13,28 RP11-276O18 RP11-14L4 6p12.3-q22.1 74,37 RP11 -89l17 RP11-149M1 9p21.1-Pter 31,18 RP11-147I11 RP11-12K1 10 133,18 RP11-10D13 RP11 -45A17 13q14.3-q31.3 39,71 RP11-211J11 RP11-306O1 17 77,65 GS1-68F18 RP11-398J5 19 63,31 CTC-546C11 CTD-3138B18 20 60,87 RP4-686C3 RP4-591C20 22q 31,25 mg XX -bac32 CTA-722E9 9 5q14.3-q23.2 33,06 RP11-302L17 RP11-14L4 6p22.2-q22.3 8,44 RP11-91n3 RP11-88h24 6p12.1-q24.1 88,89 RP11-7h16 RP11-368P1 8 145,95 GS1-77L23 CTC-489D14 9q33.1-qter 13,60 RP11-91G7 GS1-135I17 10 133,18 RP11-10D13 RP11-45A17 11q23.3 3,16 RP11-4N9 RP11-215D10 13q14.3-qter 58,59 RP11-240M20 RP11-480K16 20q13.2-q13.31 1,96 RP11-55E1 RP5-832E24 21cen-q21.3 17,39 RP11-193B6 RP11-41N19 10 8q22.3-q23.3 12,93 RP11-142M8 RP11-143P23 10 134,52 RP11-10D13 RP11-122K13 13q21.1-q21.33 18,03 RP11-322F18 RP11-335N6 13q31.1-q31.3 8,99 RP11-533P8 RP11 -505P2 11 - - najčastejšie aberácie pozorované v pyloric žľazy, adenómy boli zisky na chromozóme 20 a straty z chromozómov 5q a 6. zisky na chromozóme 20 boli pozorované v štyroch adenómov (40 %). Tri adenómy ukázala 9,8 Mb zisk chromozómu 20q13.12-q13.33, a zosilnenie celého chromozómu 20 bol pozorovaný v inom adenómu. Zisky boli vidieť na chromozómoch 1, 3Q, 5q, 7, 9q, 11 q, 12 q, 13q, 15q, 17 a 22q. Jeden pyloric adenóm žľaza ukázal amplifikácie, ktorá sa nachádza na 12q13.2-q21.1 a 20q13.3-q13.33. Päť pylorické žľazy adenómov (50%) ukázal stratu chromozómu 5q, z ktorých dva stratili celý chromozóm rameno, zatiaľ čo dvaja adenómov vykazovala 22,4 Mb odstránenie 5q11.2-q13.3 a jeden adenóm 40,3 Mb vypustenie 5q21.1-q31.2. Strata chromozómu 6 bola pozorovaná v štyroch vrátnika žľazy, adenómy (40%), z ktorých tri vykazovali úplnú stratu 6Q a jeden adenóm vykazovali 51,2 Mb deléciu 6p21.1-q16.3. Iné chromozomálne straty boli pozorované na chromozómoch 1p, 2q, 4, 9P, 10, 12 q 13q, 14q, 16, 18q, 20Q, a 21. Prehľad počtu kópií DNA aberácií pyloru žľazy adenómov je uvedený v tabuľke 2.Table 2 Prehľad počtu kópií DNA mení v 10 pyloric žľazy, adenómy | chromozómy | sprievodné klony | | nádor číslo zisky straty veľkosť segmentu (Mb ) Začiatok End 12 1q21.3-q23.3 9,95 RP11-98D18 RP11-5K23 1q42.13-Q43 14,07 RP11-375H24 RP11-80B9 3Q 111.59 RP11-312H1 RP11-23M2 5q35.1-Q35 0,3 9,11 RP11-20O22 RP11-451H23 6 q 115,76 RP11-524H19 RP5-1086L22 7 156,09 RP11 -510K8 RP11-518I12 17 77,48 RP11-4F24 RP11-313F15 20 63,47 CTB-106I1 CTB-81F12 13 - - 14 4 191,13 CTC-963K6 RP11-45F23 5q 128,59 CTD-2276O24 RP11-281O15 14q 83,81 RP11-98N22 RP11-73M18 16 89,71 RP11-344L6 RP4-597G12 20q13.2 -q13.33 10,84 RP4-724E16 CTB-81F12 15 9q33.2-q34.3 16.81 RP11-57K1 RP11-83N9 11q23.2-q24.3 16,04 RP11-635F12 RP11-567M21 12q14.3-Q15 2,58 RP11-30I11 RP11-444B24 20q13.31-q13.33 6,86 RP5-1153D9 RP5-963E22 22q 32,53 XX-p8708 CTA-722E9 16 9q33.3-qter 13,57 RP11-85C21 GS1-135I17 10p12.1-qter 110,28 RP11-379L21 RP11-45A17 11q23.1-q24.3 17,72 RP11-107P10 RP11-567M21 13q31.1-q32.1 10,84 RP11-661D17 RP11-40H10 20q13.2-q13.31 1,96 RP11-55E1 RP4-586J11 17 1p34.3-Pter 35,59 RP1-37J18 RP11-204L3 1p33-qter 203.62 RP4-739H11 RP11-551G24 2q31.1-qter 66,00 RP11-205B19 RP11-556H17 5q21.1-q31.2 40,27 CTD-2068C11 RP11-515C16 5q31.3-qter 39,06 CTD-2323H12 RP11-451H23 6 q 113.61 RP11-89D6 CTB-57H24 10 134,52 RP11-10D13 RP11-122K13 13q31.1-qter 36,14 RP11-388E20 RP11-245B11 20q13.2-qter 11,24 RP11-15M15 RP5-1022E24 18 5q11.2-Q21 0,2 51,24 CTC-1329H14 RP1-66P19 6p12.1-q16.3 51,24 RP11-7H16 RP11-438N24 9pter-Q13 66,82 GS1-41L13 RP11-265B8 10 133,04 RP11-10D13 RP11-45A17 13q21.1-q21.33 18.39 RP11-240M20 RP11-335N6 13q31.1-q31.3 12.45 RP11-551D9 RP11-100A3 21cen-q21.3 17.39 RP11-193B6 RP11-41N19 19 1p32.3-p21.1 50.40 RP11-117D22 RP5-1108M17 5q11.2-Q13 0,3 24,64 RP4-592P18 CTD-2200O3 13q12.11-q14.3 31.58 RP11-187L3 RP11-327P2 15q12-Q26 0,3 77,21 RP11-131I21 CTB-154P1 18q21.1-Q23 31,31 RP11-46D1 RP11-154H12 22q13.2-qter 10,02 CTA-229A8 CTA-799F10 20 9P-q13 66,57 GS1-41L13 RP11-274B18 12q13.2-Q21 0,1 (zosilnenie) 19,50 RP11-548L8 RP11-255I14 12q21.2-qter 55,56 RP11-25J3 RP11-1K22 18q21. 31-Q23 23,28 RP11-383D22 CTC-964M9 20q13.13-q13.33 (zosilnenie) 14,62 RP5-1041C10 RP5-1022E24 21 5p 43,15 CTD-2265D9 RP11-28I9 5q 130,26 RP11-269M20 RP11-451H23 6p 62,57 CTB-62I11 RP11-506N21 6 q 106,73 RP11-767J14 RP5-1086L22 Medzi najčastejšie aberácie zdieľaných žľazy, adenómy ako črevnú typu a pyloru boli zisk chromozómu 9q (29%), 11 q (29%), a 20Q (33%) a stratu chromozómu 5 (43%), 6 (48%), 10 (33%) a 13q (48%). Porovnaním črevné-typu a pylorické žľazy adenómy, CGH Multiarray odhalila osem klonov byť výrazne odlišné, z ktorých šesť sa nachádza na chromozóme 6q14-Q21 (p = 0,02 až 0,05) a dva klony na chromozóme 9p22-P23 (p = 0,02 a 0,04, v danom poradí) (obrázok 1). Žiadne gény umiestnené v regiónoch, na ktoré sa tieto klony boli známe, že sa podieľa na rakovinu súvisiace s biologickými procesmi. Napriek tomu, CGH Multiarray Región, po korekcii na frekvencie, s získa falošné objav rýchlosť (FDR) 1 pre všetky tieto regióny, čo naznačuje, žiadne významné rozdiely medzi týmito dvoma rôznymi typmi adenómy na úrovni chromozomálne. Neriadená hierarchická zhluková analýza prinieslo 2 klastrov. Boli tu zistené žiadne významné združenia (p = 0,8). Obrázok 1 Porovnanie počtu kópií génov zmeny v črevných a žalúdočných pyloric adenómov typu žľaza. P-hodnota (Y-os) bola vypočítaná pre každú klon, na základe Wilcoxonova testu s väzbami, a vynesú v chromozomálne poradí od chromozómu 1 do 22 (os x). Osem klonov dosiahol úroveň významnosti (p menšie ako 0,05)., Ale nedokázal udržať výrazne nízky počet falošných objav po vykonaní korekcie na mnohopočetné porovnanie Diskusia Vzhľadom k heterogénnej fenotyp rakoviny žalúdka, táto štúdia primárne zameraný porovnať počtu kópií zmeny medzi črevné typu adenómov a pyloric žľazy adenómov, s cieľom nájsť vedie ku genetickému dráhach pri vzniku rakoviny žalúdka. Adenóm-to-karcinómu progresie je pozorovaná u 30-40% z pyloru žľazy adenómov a približne 5 až 30% z adenómov črevnej typu (rozmedzie od asi 5% do rúrkových adenómov na takmer 30% pre tubulovillous a klkov adenómy) [9-11], ktorý označuje priame malígny potenciál týchto dvoch typov adenómy a robiť žalúdočné adenómy vhodný model pre detekciu skoré udalosti v žalúdku rakoviny. žliaz adenóm pyloric predstavujú nedávno uznaná organizácia [8, 26]. Podľa našich najlepších vedomostí, tento typ adenómov nebola nikdy analyzovaná array CGH skôr. Priemerný počet udalostí v tomto type adenómu bolo 5,4 (0-9), pričom 2,4 (0-7) zisky a 3 (0-7) strát. To je porovnateľné s priemerným počtom odchýlok na črevnej typu adenómov (6,5 (0-18), 3,4 (0-14) a 3.1 (0-7), v danom poradí). V pyloric žľazy, adenómy, časté udalosti boli zisk na chromozóme 20 a strát z chromozómov 5q a 6, zatiaľ čo črevná typu adenómov ukázal predovšetkým zisk z chromozómov 8, 9q a 11 q a straty z chromozómov 5q, 6, 10 a 13. V súčasná štúdie, zisk z chromozómu 7 bolo menej časté ako našiel predtým [16]. Aj keď sú tieto často mení regióny sa líšia medzi týmito dvoma typmi adenómov, hierarchickej zhlukovej analýzy nemal oddeliť skupiny. Okrem toho CGH Multiarray Región neodhalilo žiadne významné rozdiely po korekcii na mnohopočetné porovnanie. Tento nedostatok štatisticky významných rozdielov môže byť vzhľadom k obmedzenej veľkosti vzorky v kombinácii s tým, že vo všeobecnosti, adenómy ukazujú malé chromozomálne aberácie. Na druhej strane, môže byť len, že tieto morfologicky rôzne subjekty sa nelíšia, pokiaľ ide o chromozomálne ziskov a strát. Nájdenie žiadne významné rozdiely na úrovni chromozomálne nevylučuje iné genetické a biologické rozdiely, ako sú mutácie alebo promotér metylácie stave konkrétnych génov. Aberácia už zistené v adenómov môže byť skoré udalosti v procese postupného hromadenia zmien, ktoré môžu spôsobiť progresiu adenómu na karcinóm. Ako sa dalo očakávať, priemerný počet chromozómových udalostí bola nižšia u adenómov v porovnaní s karcinómy [13, 14, 27]. Okrem toho, vysoké úrovne amplifikácie sú nezvyčajné v adenómov, zatiaľ čo karcinómy často ukazujú amplifikácie na vysokej úrovni [13, 16]. Nájdené v oboch črevnej typu a pyloric žliaz adenómy, ako sú straty na chromozóme 5q aberácie, sú tiež často zistené v žalúdočných karcinómov [15, 19, 28]. Predchádzajúce výsledky CGH vykazoval významne vyšší počet chromozómu 5q strát v karcinómu čreva typu v porovnaní s difúznou typu karcinómu [29]. Chromozómu 6, tiež stratil v oboch typov adenómov, často sa vypúšťa v žalúdočných karcinómov, ako je stanovené podľa Loh štúdií [30, 31]. Navyše delécie chromozómu 6 q bolo hlásených byť zapojený do skorej fáze žalúdočnej karcinogenézy, pretože chromozóm 6 q delécie sú často detekované v skorej rakoviny žalúdka aj v črevnej metaplázia [31, 32]. Straty chromozómov 10 a 13 boli predtým pozorovali u adenómov pri nižších frekvenciách. V žalúdočných karcinómov, ako zisky a straty z chromozómu 10 a 13 boli pozorované predchádzajúcimi štúdiami CGH [15, 19, 21, 33]. Chromozóm 10 prístavy onkogén FGFR2 (10q26) a tumor supresorové gény Ptení /MMAC1 (10q23) a DMBT1 (10q25-Q26), a to ako zapojený do karcinogenézy, čo by mohlo vysvetliť pozorovanie oboch ziskov a straty chromozómov 10 v žalúdku karcinómy [34-36]. Naozaj 13. chromozómu prístavy nádorové supresorové gény, ako BRCA2 (13q12.3) a retinoblastóm génu (RB1 ) (13q14). Na rozdiel od toho zisk chromozómu 13q bola v korelácii s kolorektálny adenóm-to-karcinómu progresie, a amplifikácia chromozómu 13 bol pozorovaný v žalúdočných adenómov so závažnými intraepiteliálna neoplázia [14, 37]. Presnú funkciu chromozómu 13 aberácie u rakoviny žalúdka teda zostáva vyriešiť. Najčastejšie počtu kópií zisky boli pozorované na chromozómoch 8, 9q, 11 q a 20. Zvlášť zisky chromozómov 8 a 20 sú v súlade s predchádzajúcim (Array) štúdie CGH v oboch žalúdočnej adenómov a karcinómov žalúdka [13 - 16, 19, 25], obviňujú túto ako skoré udalosti v tumorogenézy. Hoci zisk chromozómu 11 q nebola opísaná ako častý prípad v adenómov, v karcinómov zisk alebo zosilnenie na chromozóme 11 q je bežné [13 až 16]. V tejto štúdii zisk chromozómu 11 q bolo často pozorované u adenómov, čo znamená, malígny potenciál týchto adenómov. Záver Tieto dáta ukazujú, že zisky z chromozómov 8, 9q, 11 q a 20 a straty z chromozómov 5q, 6, 10 a 13 sú skoré udalosti v žalúdku rakoviny. Napriek rozdielom fenotypových, črevné typu a pyloric adenóm žľazy významne nelíši na úrovni počtu kópií zmien. Metódy Materiálová Dvadsaťjeden žalúdočné adenómov parafínových, 11 intestinálneho typu a 10 pyloric žliaz adenómy, boli zahrnuté do tejto štúdie (obrázok 2A a 2B). Nádorové a pacient údaje sú uvedené v tabuľke 3. V každom prípade, nádor oblasť sa skladá aspoň 70% nádorových buniek, bola vymedzená na 4 um hematoxylínom a eosínu zafarbené časti tkaniva. Priľahlé 10-15 sériové rezy zo 10 um boli zafarbené hematoxylínom a zodpovedajúce tumor oblasť bola microdissected pomocou chirurgického noža. Časť konečnej 4um "sendvič" bol vyrobený a zafarbené hemotoxylin a eosínu, sa porovná sa prvá snímka ako kontrola. Po Deparafinizace, DNA bola extrahovaná metódou stĺpcové báze (QIAamp DNA Mini Kit, Qiagen, Westburg, Leusden, NL) [38] .Table 3 nádoru a informácií o pacientovi nádor číslo typ adenóm stupeň dysplázie Pohlavie Vek spoločností nádor číslo typ adenóm stupeň dysplázie Pohlavie Vek 1 Črevné Stredná Male 75 12 pyloric žľazy Stredná Muž 78 2. črevných Stredná Muž 45 13 pyloric priechodky Mild Male 50 Sims 3 Črevné Stredná muž 80 14 pylorických žľaza Ťažká Žena 76 4. črevných Stredná Male 79 15 pyloric žľazy Stredná Žena 85 5 Črevné Stredná Male 76 16 pyloric žľazy Stredná Muž 63 6 Črevné Stredná Muž 75 17 pylorických žľaza Mild Žena 86 7 Črevné Mild Muž 57 18 pylorických žľaza Stredná Žena 59 8 črevných Stredná Muž 64 19 pylorických žľaza Stredná Muž 69 9 črevných Mild Male 63 20 pyloru žľazy Stredná Žena 78 10 črevných Mild Male 75 21 pylorických žľazy Stredná Male ? 11 črevnej Stredná Žena 45 Obrázok 2 Haematoxilin a eosínu (pôvodné zväčšenie x 400) črevného typu (a) a pyloru žľazy ( B) žalúdočné adenómy. A. Črevné typu adenóm žalúdka zložený z nepravidelne usporiadaných žliaz zložených z črevnej typu epitelu s eozinofilné cytoplazmou a zväčšenými jadrami. B. pylorických žľaza adenóm žalúdka zložené z husto chrbtom k sebe balenej žľazy skladajúci sa z buniek s bledou cytoplazmy a malými guľatými hyperchromatická jadier. Genómovej DNA získané z periférnej krvi z desiatich normálnych jedincov sa spoja (buď desať samice alebo desať mužov , v závislosti od pohlavia pacienta, z ktorého bola získaná adenóm), a použité ako kontrolné referenčné DNA. Array CGH Array CGH bol vykonaný v podstate, ako bolo opísané skôr [39]. V stručnosti, 300 ng nádorové a referenčné DNA, sex Nezhoda ako experimentálne kontrola, boli označené náhodných primérov (Bioprime DNA Labelling System, Invitrogen, Breda, NL), každú v objeme 50 ul. Non včlenené nukleotidy boli odstránené za použitia ProbeQuant G-50 Mikrokolony (Amersham Biosciences). Cy3 označené testovacie genómovej DNA a Cy5 značené referenčné DNA boli spojené a spoločne vyzráža sa 100 ug ľudského Cot-1 DNA (Invitrogen, Breda, NL) pridaním 0,1 objemu 3 M octanu sodného (pH 5,2) a 2,5 objemami ľadovej za studena 100% etanol. Zrazenina sa oddelí odstredením pri 14000 otáčkach za minútu počas 30 minút pri teplote 4 ° C a rozpustí sa v 130 ul hybridizačnej zmes, ktorá obsahuje 50% formamid, 2 x SCC a 4% SDS. Hybridizačného roztoku sa zahrieva počas 10 minút pri teplote 73 ° C, aby došlo k denaturácii DNA, nasledované 60-120 minútach inkubácie pri 37 ° C na to, aby Cot 1 DNA pre blokovanie repetitívnych sekvencií. Zmes bola hybridizována na poli, ktorý obsahuje približne 5000 klonov Videli v troch vyhotoveniach a šíri pozdĺž celého genómu s priemerným rozlíšením 1,0 Mb. Tieto klony sa skladá z klonu Sanger BAC set s priemerným rozlíšením pozdĺž celého genómu 1.0 MB [40] OncoBac nastavte [41], a vybrané klony záujmu, získaných z detskej nemocnice Oakland Research Institute (Chori). Vybrané klony obsahujú zbierku BAC klonov na chromozóme 6 zaplnenie medzier väčších ako 1 MB, a full-pokrytie contigs o konkrétnych oblastí na chromozómoch 8, 13 a 20. Hybridizácia bola vykonávaná v v hybridizačním stanici (Hybstation12 - Perkin Elmer Life Sciences, Zaventem, Belgicko) a inkubované po dobu 38 hodín pri teplote 37 ° C. Po hybridizácii boli rezy premyté v roztoku obsahujúcom 50% formamid, 2 x SCC, pH 7 po dobu 3 minút pri teplote 45 ° C, nasleduje premývanie 1 minútu pri izbovej teplote s PN pufer (PN: 0,1 M sodiumphosphate, 0,1% Nonidet P40, pH 8), 0,2 x SSC, 0,1 x SCC a 0,01 × SCC. akvizícia Satelitné snímky a analýza dát snímok z polí sa získala skenovaním (Agilent DNA čipu snímača technológie Agilent, Palo Alto, USA ) a kvantifikácia signálu a pozadia intenzít pre každú škvrnu pre dva kanály Cy3 a Cy5 bolo vykonané Imagen 5,6 softvér (BioDiscovery Ltd, Marina del Rey, CA, USA). Miestny pozadí bol odpočítaný zo signálu mediánu intenzity a nádory sa k referenčnému pomery boli vypočítané. Pomery boli normalizované proti režimu pomerov všetkých autosomes. Klony so zlou kvalitou jedného z triplikátech a hybridizácie so štandardnou odchýlkou (SD) £ 0,22 a klony s > 50% chýbajúce hodnoty vo všetkých adenómov boli vylúčené, takže 4648 klony pre ďalšiu analýzu. Všetky následné analýzy boli vykonané s ohľadom na pozíciu klon z UCSC May2004 zmrazenie ľudskej Zlaté chodníky. Array CGH hladký [42, 43], bol použitý pre automatizovanú detekciu zlomov určiť počet kópií ziskov a strát. Vzhľadom k tomu, miera kvality je pozorovaná v DNA získané z formalínom fixovaných parafínových žalúdočné tkaniva, boli použité rôzne parametre vyhladenie, v závislosti na kvalite hybridizácia. Pre pole CGH profilov so štandardnou odchýlkou menšou alebo rovnajúcou sa 0,15, medzi 0,15 a 0,20, alebo medzi 0,20 a 0,22, aplikovaný vyhladzovanie parametre pre stanovenie zisky a straty boli 0,10, 0,15 a 0,20 v tomto poradí. Log 2 nádor referenčný pomer vyšší ako 1 považovalo za zosilnenie. Štatistická analýza bez dozoru hierarchickej zhlukovej analýzy bola vykonaná analýza distribúciou genomických profilov všetkých adenómov s využitím TMEV softvér 3.0.3 [44] , Na normalizované vyhladené log 2 nádor na normálne pomery intenzity fluorescencie na báze hierarchický strom bol postavený pomocou parametrov úplná tiahel a Euclidean vzťah vzdialenosti. Pearson Chi-kvadrát test bol použitý pre analýzu korelácie medzi klastra členstvo a typom adenómu (SPSS 11.5.0 pre Windows, SPSS Inc., Chicago, IL, USA).
|