Composition en acides gras du tissu adipeux sous-cutané et de la muqueuse gastrique: il y a une relation avec l'ulcération gastrique
Background
Résumé: est-il une relation avec l'ulcération gastrique

composition en acides gras du tissu adipeux sous-cutané et de la muqueuse gastrique? in vitro et des études épidémiologiques indiquent que les acides gras poly-insaturés alimentaires peuvent jouer un rôle protecteur contre l'ulcère gastroduodénal chez l'homme. la composition des acides gras du tissu adipeux est considéré comme le reflet de l'apport en acides gras alimentaires. Le but de la présente étude est d'examiner adipeux et les niveaux d'acides gras de la muqueuse gastrique par rapport à l'état de l'ulcération gastrique.
Méthodes
Cinquante-deux patients ambulatoires adultes subissant une endoscopie digestive haute ont participé à l'étude. Des échantillons de tissu adipeux ont été prélevés dans l'abdomen et les fesses pendant la procédure endoscopique, et des échantillons de tissu gastrique ont été prélevés à partir d'un sous-échantillon de 30 sujets. La présence de Helicobacter pylori
a été déterminée en utilisant le test CLO. chromatographie en phase gazeuse capillaire a été utilisé pour l'extraction de 36 et 42 tissu adipeux et la muqueuse gastrique lipides respectivement de les Résultats
Les acides gras monoinsaturés (AGMI) C18: 1n
-12C, C16: 1n.
- 5, C16: 4n
-1 et les acides gras polyinsaturés (AGPI) C16: 3n
-4, C20: 3n
-3, C20: 4n
-6, C21: 5n
-3 et C18: 2n
9C, 12t de la muqueuse gastrique étaient présents dans des proportions plus élevées dans l'ulcère patients négatifs. Ces acides gras insaturés, cependant, ont contribué chacun moins de 1% en moyenne à la teneur totale en acides gras. En outre, les niveaux moyens plus élevés de l'acide eicosapentaénoïque (EPA) C20: 5n
-3 et l'acide docosahexaénoïque (DHA) C22: 6n
-3 ont été détectés dans des échantillons abdominaux et fessiers en CLO contrôles négatifs, par rapport à CLO positif contrôles. Le tissu adipeux et de la muqueuse gastrique n
-6 et les niveaux d'acide trans
gras étaient positivement corrélées linéairement (r = 0,37 et 0,41 pour n
-6 et trans acides
gras respectivement).
Conclusion
Certains AGMI et AGPI de la muqueuse gastrique mineures semblent être présents dans des proportions plus élevées dans l'ulcère patients négatifs. Dans l'ensemble, les résultats ne fournissent que de faibles preuves d'une association entre les acides gras de la muqueuse gastrique et la présence d'ulcères gastriques. Les niveaux moyens plus élevés d'EPA et de DHA dans le tissu adipeux abdominal et les fesses en CLO contrôles négatifs pourraient être un indicateur que l'alimentation AC inhibent Helicobacter pylori
croissance. Des études plus importantes sont nécessaires pour fournir des preuves d'un effet biologiquement pertinent.
Contexte
Pour plus d'un siècle, la maladie de l'ulcère peptique a été une cause majeure de morbidité et de mortalité. La physiopathologie de la maladie de l'ulcère gastro-duodénal est centrée sur un déséquilibre entre les facteurs agressifs et de protection dans l'estomac [1].
Vingt-cinq ans se sont écoulés depuis la découverte de Marshall et Warren du lien entre Helicobacter pylori
(H. pylori
) l'infection et de la maladie de l'ulcère gastro-duodénal [2]. Les résultats cliniques de l'infection de H. pylori est très probablement le résultat d'interactions complexes entre les facteurs bactériens, environnementaux et liés à l'hôte [3, 4]. La prévalence de l'infection de H. pylori varie, a diminué au cours des dernières décennies dans les pays les plus développés [4]. Les données épidémiologiques indiquent que la prévalence de la baisse de la maladie de l'ulcère gastro-duodénal peut être partiellement attribuable à une consommation accrue d'acides gras polyinsaturés (AGPI), une hypothèse étayée par des preuves in vitro de la toxicité de ces substances à H. pylori
[5].
Il a donc été suggéré que les graisses alimentaires joue un rôle protecteur contre la maladie de l'ulcère gastro-duodénal. Les acides gras (AF) présents dans le tissu adipeux comprennent certains acides gras qui ne peuvent pas être synthétisés de manière endogène et sont, par conséquent, considérés comme des biomarqueurs valides de l'apport alimentaire de ces AF [6]. Depuis le tissu adipeux a un chiffre d'affaires lent, il est un choix attrayant pour l'étude de l'apport en acides gras alimentaire à long terme [6]. Les acides gras qui ne peuvent pas être synthétisés de manière endogène à partir des glucides et qui sont considérés comme des biomarqueurs valides de l'apport en acides gras alimentaires sont: n
-3 PUFA, tels que l'acide linoléique (C18: 2n
-6), l'acide eicosapentaénoïque (EPA) (C20: 5n
-3) et l'acide docosahexaénoïque (DHA) (C22: 6n
-3), n
-6 PUFA, tels que l'acide α-linolénique (18: 3n
-3 ),
trans AF et AF impaires et à chaîne ramifiée [7]. Monoinsaturés (AGMI AF) et AF saturés (ZPC) ne reflètent pas les habitudes de consommation alimentaires, à l'exception des ZPC impaires [6].
Il est possible que certains AGPI, en particulier ceux du n
-3 groupe, sont capables de moduler les réponses immunitaires à H. pylori
. De nombreuses études rapportent les effets de Fas ingérés sur les aspects moléculaires et cellulaires de l'immunité [8]. Les SFA sont capables d'induire l'activation de TLR2 et TLR4, tandis que insaturées AF, tels que le n
-3, inhibent les voies de signalisation médiée par un TLR et l'expression du gène [9, 10]. En outre, toute variation induite par l'alimentation en composition d'acides gras des dépôts de graisse peut influer directement sur l'organisation de la membrane des cellules immunitaires et entraîner une altération de fonctions [11, 12]. En particulier, diététique n
-3 PUFA modifient la composition T microdomaines de la membrane cellulaire et peuvent donc influencer les complexes de signalisation et modulent l'activation des lymphocytes T in vivo [13, 14].
Prostaglandines (PGs) jouent un rôle important dans le maintien de la l'intégrité gastro duodénal muqueuse [15]. PGs stimulent la sécrétion muqueuse du bicarbonate, d'accélérer la prolifération des cellules, d'améliorer la sécrétion de mucus et le flux sanguin de la muqueuse, d'augmenter les groupes sulfhydryle de la muqueuse et de promouvoir la stabilité lysosomale et la formation de phospholipides muqueuses [16-19]. l'acide linoléique alimentaire (C18: 2n
-6) est converti en acide arachidonique (C20: 4n
-6) qui est le principal acide gras 20 insaturé en carbone utilisé pour la production des PG par la voie de la cyclooxygénase. Ainsi, une augmentation de l'apport d'acide linoléique pourrait conduire à une production accrue de PGs endogènes.
Les phospholipides de la muqueuse gastrique fournissent un revêtement hydrophobe qui protège contre les extrinsèques et intrinsèques insultes. Le niveau de saturation et la longueur de la chaîne des AF incorporés dans ces phospholipides influencent à la fois l'hydrophobie de la membrane et la perméabilité [20].
Bien que certaines études ont examiné la muqueuse gastrique par rapport à H. pylori
, on connaît peu la composition en acides gras de la muqueuse gastrique par rapport à l'ulcération gastrique. Le but de la présente étude est de comparer la composition en acides gras du tissu adipeux et la muqueuse gastrique chez des sujets présentant des ulcérations et des sujets gastrique sans preuves d'ulcération.
Méthodes
sujets: L'étude a été réalisée entre Juin 2000 et novembre 2004 à la clinique externe gastroentérologie de l'hôpital universitaire de Crète. Les patients éligibles étaient ceux présents ou passés douleurs abdominales, qui ont subi le dépistage de l'endoscopie digestive haute. Les patients ont été exclus si elles étaient connues pour avoir une maladie concomitante, étaient sur tous les médicaments ou avaient pris des antagonistes H2 des récepteurs, des inhibiteurs de la pompe à protons, le bismuth, les antibiotiques, les anti-inflammatoires non stéroïdiens, ou des corticostéroïdes dans les 2 mois de l'examen. Cinquante-deux patients, tous les résidents de l'île de Crète, ont participé à l'étude. L'âge des patients variait de 21 à 89 ans (60 ans, SD 16,9, médiane 64 ans moyenne). Le pourcentage de sujets féminins était similaire chez les patients avec et sans ulcère gastrique, soit 9 sur 16 (56%) et 21 des 36 (58%), respectivement. Tous les patients ont donné leur consentement éclairé avant l'endoscopie, la biopsie endoscopique et la collecte d'échantillons de tissus adipeux. L'étude a été approuvée par le comité d'éthique de la Faculté de médecine de l'Université de Crète.
La collection de l'abdomen et les fesses des échantillons de tissu sous-cutané, ainsi que celle du tissu gastrique a été réalisée au département de gastro-entérologie de l'hôpital universitaire d'Héraklion, en Crète.
Tous les patients ont fourni des échantillons de tissu sous-cutané de la fesse et 42 ont fourni des échantillons de tissu sous-cutané abdominal. des échantillons de tissus de la muqueuse gastrique ont été prises dans un sous-ensemble de 30 patients.
Détection de l'ulcère gastrique
La présence de l'ulcère gastrique a été déterminée par endoscopie digestive haute menée dans le département de gastro-entérologie de l'hôpital universitaire de Héraklion, en Crète.
détection de l'infection de H. pylori
Le test uréase CLO rapide a été utilisé pour détecter H. pylori
de biopsies antrales gastriques. Ce test a été rapporté pour avoir une haute sensibilité et une spécificité [21]. Les biopsies ont été prises à partir de vingt-cinq patients, pour un examen histologique. Les résultats histologiques correspondaient aux résultats de l'essai de CLO dans tous les cas.
Mesures de tissus adipeux
deux abdominale et les fesses des échantillons de tissu adipeux sous-cutané ont été recueillies différences car il sont rapportés dans la teneur en acides gras chez les dépôts abdominaux et fessiers [22] . Des échantillons de tissus abdominaux et les fessiers ont été collectés par aspiration, en utilisant la méthode décrite par katan Beynen et [23]. Le procédé particulier est connu pour être rapide et sûr, ce qui provoque plus d'inconfort que d'une ponction veineuse routine [23]. des échantillons de tissus abdominaux et les fesses adipeux peuvent être stockés en toute sécurité jusqu'à 1,5 an sans changements dans la composante FA [23]. Des échantillons de tissus adipeux abdominaux ont été prélevés dans le quadrant supérieur gauche de la zone abdominale, et à proximité immédiate de l'ombilic. Des échantillons de tissu adipeux fessards ont été prélevés dans le quadrant extérieur supérieur gauche de la région fessière. Les deux échantillons de tissu adipeux abdominal et les fesses ont été prises par l'utilisation de tubes de 10 ml Vacutainer. Avant l'aspiration, les sites d'aspiration ont été pulvérisées avec un anesthésique local (chlorure d'éthyle).
Échantillons de tissu adipeux ont été stockés à -80 ° C. Avant l'analyse, les échantillons ont été décongelés et la graisse ont été transférés dans des tubes de 10 ml à bouchon à vis en utilisant des pipettes Pasteur et plusieurs gouttes (~ 0,5 ml) de chloroforme: methanol (2: 1, v /v). Les esters méthyliques des AF composant gras (FAME) ont été préparées dans des flacons à bouchon à vis selon la méthode décrite par Metcalfe et al (1966) [24]. En bref, 20-30 mg d'échantillon de graisse ont été saponifié avec 1,0 ml de NaOH dans le méthanol et le FAME ont été préparées avec 14% de trifluorure de bore dans le méthanol après l'extraction avec de l'hexane après lavage avec du NaCl saturé. L'hexane (couche supérieure) contenant le FAME a été transféré dans des flacons en GC et stocké à -20 ° C jusqu'à l'analyse. Le FAME ont été séparés sur un mm Id 100 × 0,25. SP-2560 empressait colonne capillaire de silice, revêtue de 0,25 um de silicone cyanopropyle fournies par SUPELCO (Bellefonte, PA, USA - SGE Australie), en utilisant un Shimadzu (Shimadzu Corporation, Kyoto, Japon) GC-17A /FID chromatographe en phase gazeuse équipé d'un AOC- auto-injecteur 20I. Le logiciel ChemStation Class-VP a été utilisé pour l'identification et la quantification des pics.
Séparation de base de plus de 50 pics de FAME a été accompli au moyen de normes de FAME mixtes (Sigma). Les conditions analytiques employées étaient les suivantes: volume de 1 ul injecté, le gaz porteur d'hélium (1,1 ml /min), une température d'injection de 250 ° C, FID 260 ° C, de rapport de division de 1: 4 à 1:20 (en fonction de l'échantillon . quantité), et la température du four de 140 ° C à 245 ° C avec un programme de température étagée, dans un temps total de course de 54 min
Fas extraits de lipides du tissu adipeux étaient C12: 0, C14: 0, C14: 1n
-5T, C14: 1n
-7t, C14: 1n
-9t, C15: 0, C16: 0, C16: 1n
-9t, C16: 1n
-7C , C16: 1n
9C, C17: 0, C18: 0, somme de tous les trans
C18: 1, C18: 1n
9C, C18: 1n
-11cis
, C18: 1n
-12C, C18: 1n
-13c, C18: 1n
-14C, C18: 2n
-9t, 12t, C18: 2n
9C, 12t, C18 : 2-9c, 12c, C20: 0, C18: 3n
-6, C20: 1, C18: 3n
-3, C18: 2 conjugué, C20: 2n
-9, C20: 2n
-6, C20: 3n
-6, C20: 4n
-6, C20: 3n
-3, C20: 5n
-3, C22: 3n
-3 , C22: 4, C22: 5n
-3 et C22: 6n
-3. Tous les pics identifiés ont été inclus dans les analyses statistiques
En outre, les quatre groupes d'acides gras SFA, AGMI, AGPI et
trans AF, le rapport n
-6:. N
-3 AF , les ratios SFA: AGMI et SFA: AGPI et la somme d'EPA et de DHA ont été considérés comme
mesures de tissus de la muqueuse gastrique
Endoscopic pincée biopsie a été utilisée pour obtenir huit échantillons de tissus provenant de l'antre du pylore de chaque patient.. Où un ulcère gastrique était évidente, les échantillons ont été prélevés dans des sites qui sont à distance de la lésion.
Tissu de la muqueuse gastrique a été stocké à -80 ° C. Avant l'analyse, les échantillons ont été décongelés et la biopsie de pincement ont été transférés dans des tubes de 10 ml à bouchon à vis en utilisant des pipettes Pasteur et plusieurs gouttes (~ 0,5 ml) de chloroforme: methanol (2: 1, v /v). Les esters méthyliques des AF composant gras ont été préparées dans des flacons à bouchon à vis selon la méthode décrite par Metcalfe et al (1966) [24]. En bref, 20 à 30 mg d'un échantillon de tissu gastrique ont été saponifié avec du NaOH 1,0 ml de methanol et le FAME ont été préparées avec 2 ml de trifluorure de bore à 14% dans du methanol, après extraction avec de l'hexane après lavage avec 3,0 ml de NaCl saturé. L'hexane (couche supérieure) contenant le FAME a été transféré dans des flacons en GC et stocké à -20 ° C jusqu'à l'analyse. Le FAME du tissu gastrique ont été libérés des deux triacylglycérols et phospholipides puisque la quantité totale du tissu gastrique recueillies auprès de chaque patient a été relativement faible. Le FAME ont été séparés sur un mm Id 100 × 0,25. SP-2560 empressait colonne capillaire de silice revêtu d'une cyanopropyle 0,25 um de silicone fournie par SUPELCO, en utilisant un chromatographe en phase gazeuse Shimadzu GC-17A équipé d'un auto-échantillonneur AOC-20I et un FID. Le logiciel ChemStation Class-VP a été utilisé pour l'identification et la quantification des pics.
Le FAME extrait de certains des échantillons ont également été séparés sur une deuxième colonne capillaire afin de comparer les résultats et décider de la colonne la plus appropriée à utiliser . La colonne utilisée était la BPX70 50 x 0,22 mm 0,25 U Füsse colonne de silice revêtue de 0,2 um de polysiloxane biscyanoproplyl, en utilisant un Shimadzu (Shimadzu Corporation, Kyoto, Japon) GC 2010GC chromatographe en phase gazeuse équipé d'un auto-échantillonneur AOC-20I et un FID. Lors de l'utilisation de la deuxième colonne, la solution logicielle GC a été utilisée pour l'identification et la quantification des pics. Comme la première colonne (SP-2560) a fourni une analyse plus claire des cis
- et
trans - isomères de C18: 1 et C18: 2, il a été utilisé pour toutes les analyses
séparation de base de la. pics FAME a été accomplie par des normes FAME mixtes (Sigma). Les conditions d'analyse employées étaient les suivantes: 1 volume de pi injecté, gaz porteur d'hélium utilisé (20 cm /sec) (hydrogène pour BPX70), température de l'injecteur 250 ° C, la température FID 250 ° C, rapport de division 1 heures 20-à-1h50 (en fonction de la quantité de l'échantillon), et la température du four de 140 ° C à 240 ° C (de 90 ° C à 230 ° C pour BPX70) avec un programme de température étagée dans un temps total de 60 min.
Fas extraits à partir des lipides de la muqueuse gastrique étaient C12: 0, C13: 0, C14: 0, C15: 0, C16: 0, C17: 0, C18: 0, C20: 0, C22: 0, C14: 1n
9C , C16: 1n
9C, C18: 1n
9C, C18: 1n
-11c, C18: 1n
-12C, C18: 1n
-13c, C18: 1n
-14C, C20: 1, C16: 1n
-5, C16: 2n
-4, C16: 4n
-1, C16: 3n
-4, C18: 2-9c , 12c, C18: 3n
-3, C18: 3n
-6, C18: 2 conjugué, C20: 3n
-3, C20: 3n
-6, C20: 4n
-3, C20: 4n
-6, C20: 5n
-3, C21: 5n
-3, C22: 4n
-3, C22: 5n
-3, C22: 6n
-3, C22: 5n
-6, C16: 1n
-9t, C14: 1n
-5T, C14: 1n
-7t, somme de tous
trans C18: 1, C18: 2n
-9t, 12t, C18: 2n
9C, 12t et C18: 2n
-9t, 12c. Tous les pics identifiés ont été inclus dans les analyses statistiques
En outre, comme dans le tissu adipeux, les quatre groupes d'acides gras SFA, AGMI, AGPI et
trans AF, le rapport des n
-6:. N
-3 AF, les ratios SFA: AGMI et SFA:. l'analyse des données de PUFA et la somme d'EPA et de DHA ont été considérés comme
le test du chi carré de l'indépendance a été appliquée pour tester les associations possibles entre catégorique variables. Le coefficient de corrélation de Pearson a été calculé afin d'évaluer d'éventuelles corrélations linéaires entre les autorités fédérales de chacun des trois sites. Les niveaux moyens de Fas ont été comparés entre les deux groupes de l'état de l'ulcération gastrique en utilisant le test t de Student pour échantillons indépendants à chacun des trois sites. En outre, l'analyse de covariance a été entreprise pour tenir compte du possible effet de confusion de l'âge. Les résultats ont été considérés comme significatifs au niveau de 5%. Les résultats du paquet statistique SPSS 15.0 a été utilisé tout au long.
Sur les 52 patients externes qui ont participé à l'étude, 16 (31%) se sont révélés avoir une ulcération gastrique. Vingt patients (39%) étaient CLO positive. CLO positivité a été trouvé à être fortement associée au statut de l'ulcération gastrique (p = 0,003): Onze patients sur 16 avec l'ulcération gastrique étaient CLO positive (69%), alors que le nombre de patients positifs CLO sans ulcération gastrique était neuf sur 36 ( 25%). Répartition par âge variait également selon l'état de l'ulcération: les patients souffrant d'ulcère gastrique avaient un âge moyen de 67 ans (SD = 15,2) alors que l'âge moyen des patients sans ulcération gastrique était de 58 ans (SD = 17,4)
A linéaire positive. une corrélation a été observée entre les grappes d'acides gras à chacun des deux sites de tissu adipeux: SFA (r = 0,73, p < 0,0001), monoinsaturés (r = 0,81, p < 0,0001), AGPI (r = 0,84, p < 0,0001), n ​​
-3 groupe (r = 0,54, p < 0,0001), n ​​
-6 groupe (r = 0,83, p < 0,0001),
trans (r = 0,612, p <0,0001), AGMI: rapport AGPI (r = 0,86, p < 0,0001), AGMI: rapport SFA (r = 0,74, p < 0,0001), n ​​
-3: n
-6 rapport (r = 0,63, p < 0,0001) et la somme d'EPA et de DHA (r = 0,88, p. < 0,0001) en utilisant des mesures des 42 sujets qui avaient des échantillons provenant de deux sites de preuves
faible d'une corrélation positive a été trouvée entre tissu adipeux et la muqueuse gastrique pour le n
-6 grappe (fesse r = 0,37, p = 0,043, n = 30) et le cluster
trans (r abdomen = 0,41, p = 0,047, n = 23). Aucune autre corrélation statistiquement significative n'a été décelée entre les tissus adipeux et gastrique.
Composition moyenne des acides gras n'a pas été trouvé diffèrent entre les sujets avec et sans ulcération gastrique dans les deux sites de tissu adipeux. Les différences dans la composition moyenne des acides gras dans la muqueuse gastrique ont été, cependant, détectés. Les détails sont fournis dans le tableau 1. En résumé, les différences statistiquement significatives ont été observées pour la ZPC C13: 0 et C15: 0 avec des niveaux moyens plus élevés chez les patients présentant une ulcération gastrique. Les concentrations moyennes des AGMI suivantes ont également été trouvés à différer de façon statistiquement significative entre les deux groupes: C14: 1n
9C, C16: 1n
-5, C16: 4n
-1, C18: 1n
-12C et C20: 1 avec des niveaux moyens plus élevés de C14: 1n
9C et C20: 1 et des niveaux inférieurs de C16: 1n
-5, C16: 4n
-1 et C18 : 1n
-12C chez les patients présentant une ulcération gastrique. Les PUFA qui diffèrent sont les suivants: C16: 2n
-4, C16: 3n
-4, C20: 3n
-3, C20: 4n
-6, C21: 5n
-3, C22: 4n
-3 et trans
C18: 2n
9C, 12t avec des niveaux moyens plus élevés de C16: 2n
-4 en ulcère patients positifs et des niveaux moyens plus élevés de C16 : 3n
-4, C20: 3n
-3, C20: 4n
-6, C21: 5n
-3, C22: 4n
-3 et C18: 2n
9C, 12t en ulcère patients négatifs. Les détails sont fournis dans le tableau 1.Table 1 Les niveaux moyens d'acides gras extraits des lipides de la muqueuse gastrique selon la présence (N = 11) ou l'absence (N = 19) de l'ulcération peptique.

acide gras de ulcère présente
(N = 11)
Aucun ulcère présent
(N = 19)

95% intervalle de confiance.
p-valeur
p-valeur ajustée pour l'âge

moyenne (SE)
moyenne (SE)



SFAA
30.12 (0,540)
28,31 (0,668)
-0,179 à 3,806
0,073
0,069
MUFAb
27,17 (0,735)
25,87 (0,491)
-0,442 à 3,052
0,137
0,156
PUFAc
39.19 ( 0,825)
41.01 (0,510)
-3,701 à 0,052
0,056
0,090
n
-3 *
17,72 (1.407)
18,88 (0,550)
-3,787 à 1,468
0,374
0,410
n
-6 **
18.01 (0,768)
18,07 (0,503)
-1,869 à 1,740
0,942
0,856
n
-6 /-3 n

1,09 (0,100)
0,98 (0,045)
-0,080 à 0,313
0,237
0,205
AGMI /SFA
0,91 (0,034)
0,92 (0,020)
-0,087 à 0,061
0,729
0,675
AGMI /AGPI
0,70 (0,028)
0,63 (0,019)
0,004 à 0,131
0,065
0,089
EPA † + DHA ‡
14.34 (1.306)
15.14 (0,550)
-3,305 à 1,698
0,516
0,560
total trans
0,94 (0,074)
0,98 (0,054)
-0,220 à 0,150
0,702
0,700
acides gras saturés
C12: 0
0,36 (0,046)
0,31 (0,039)
-0,087 à 0,169
0,519
0,837
C13: 0
0,39 (0,077)
0,17 (0,031)
0,081 à 0,371
0,003
0,005
C14: 0
0,65 (0,071)
0,53 (0,040)
-0,029 à 0,279
0,108
0,088
C15: 0
1,92 (0,053)
1,56 (0,071)
de 0,158 à 0,576
0,001
0,002
C16: 0
17,38 (0,344)
16.40 ( 0,390)
-0,207 à 2,155
0,103
0,072
C17: 0
0,36 (0,040)
0,31 (0,032)
-0,058 à 0,152
0,371
0,481
C18: 0
8,03 (0,292)
8,28 (0,364)
-1,333 à 0,834
0,641
0,672
C20: 0
0,23 (0,051)
0,16 (0,012)
-0,020 à 0,148
0,134
0,190
C22: 0
0,51 (0,131)
0,28 (0,055)
-0,018 à 0,481
0,069
0,070
monoinsaturés acides gras
C14: 1n
9C
0,25 (0,028)
0,17 (0,007)
0,035 à 0,130
0,001
0,001
C16: 1n
-5
0,09 (0,019)
0,17 (0,019)
-0,133 à -0.013
0,018
0,010
C16: 1n
9C
0,55 (0,057)
0,55 (0,044)
-0,153 à 0,142
0,943
0,867
C16: 4n
-1
0,60 (0,056 )
0,78 (0,046)
-0,332 à -0.027
0,022
0,020
C18: 1n
9C
22,38 (0,608)
21.19 (0,485)
-0,428 à 2,799
0,144
0,169
C18: 1n
-11c
2,09 (0,042)
2,00 (0,057)
-0,073 à 0,263
0,259
0,273
C18: 1n
-12C
0,09 (0,009)
0,13 (0,009)
-0,066 à -0.011
0,006
0,012
C18: 1n
-13c
0,04 (0,006)
0,02 (0,006)
-0,001 à 0,035
0,059
0,035
C18: 1n
-14C
0,14 (0,018)
0,13 (0,009)
-0,032 à 0,041
0,814
0,615
C20: 1
0,20 (0,030)
0,11 (0,009) 0,037
à 0,140
0,001
0,001
polyinsaturés acides gras
C16: 2n
-4
0,55 (0,057)
0,33 (0,031)
0,973 à 0,339 0,001

0,001
C16: 3n
-4
1,13 (0,079)
1,45 (0,089)
-0,592 à -0.053
0,021
0,014
C18: 2-9c, 12c
16,97 (0,864)
16,57 (0,514)
-1,521 à 2,328
0,671
0,497
C18: 3n
-3
0,34 ( 0,056)
0,47 (0,067)
-0,331 à 0,072
0,200
0,167
C18: 3n
-6
0,14 (0,018)
0,15 (0,023)
-0,077 à 0,058
0,778
0,700
C18: 2 conjugué
0,10 (0,008)
0,08 (0,005)
-0,002 à 0,032
0,095 0,061

C20: 3n
-3
0,04 (0,01)
0,34 (0,07)
-0,493 à -0.092
0,006
0,004
C20: 3n
-6
0,05 (0,008)
0,04 (0,010)
-0,014 à 0,044
0,307
0,241
C20: 4n
-3
2,20 (0,114)
1,91 (0,118)
-0,076 à 0,655
0,116
0,110
C20: 4n
-6
0,11 (0,018)
0,38 (0,084)
- 0,492 à -0,035
0,025
0,018
C20: 5n
-3
11,58 (1.119)
12,53 (0,440)
-3,043 à 1,147
0,362
0,433
C21: 5n
-3
0,13 (0,014)
0,23 (0,015)
-0,148 à -0.057
< 0,0001
< 0,0001
C22: 4n
-3
0,15 (0,030)
0,22 (0,017)
-0,134 à -0.001
0,045
0,047
C22: 5n
-3
0,67 (0,136)
0,79 (0,036)
-0,350 à 0,109
0,293
0,373
C22: 6n
-3
2,75 (0,222)
2.61 (0,223)
-0,549 à 0,838
0,673
0,792
C22: 5n
-6
0,73 (0,145)
0,94 (0,053)
-0,474 à 0,055
0,117
0,139
trans
C14: 1n
-5T
0,09 (0,017)
0,11 (0,017)
-0,080 à 0,027
0,318
0,199
C14: 1n
-7t
0,33 (0,046)
0,28 (0,032)
-0,060 à 0,163
0,351
0,514
C16: 1n
-9t
0,18 (0,027)
0,21 (0,023)
-0,107 à 0,041
0,372
0,374
C18: 1n
-t 1
0,23 (0,012 )
0,32 (0,038)
-0,190 à 0,019
0,108
0,162
C18: 2n
-9t, 12t
0,12 (0,029)
0,06 (0,021)
-0,014 à 0,130
0,111
0,047
C18: 2n
9C, 12t
0,17 (0,039)
0,42 (0,068)
-0,437 à -0,050
0,015
0,009
C18: 2n
-9t, 12c
0,12 (0,009)
0,27 (0,068)
-0,333 à 0,037
0,114 0,063

une SFA = somme des acides gras saturés
b AGMI = somme des acides gras mono-insaturés
c AGPI = somme de * somme de n
-3 gras acides de acides gras polyinsaturés
** somme de n
-6 acides gras
† eicosapentaénoïque C20 d'acide: 5n
-3 (EPA)
‡ docosahexaénoïque C22 d'acide: 6n
-3 (DHA)
1 Tous C18 trans: 1 (C18: 1n-6t, C18: 1n-7t, C18: 1n-8t et C18: 1n-9t)
Chez les sujets qui ne sont pas trouvés d'avoir un ulcère gastrique, la composition en acides gras de tissu abdominal a été trouvé à différer selon le statut CLO, qu'il y ait des niveaux plus élevés de la ZPC C12: 0 et C20: 0 dans le tissu abdominale chez les patients positifs CLO. En revanche, les niveaux moyens de C20: 4n
-6, C20: 3n
-3, C20: 5n
-3, C22: 4, C22: 5n
-3 et C22: 6n
-3 ont été jugés significativement plus faible chez les patients positifs CLO. Les détails sont fournis dans le tableau 2.Table 2 niveaux moyens des acides gras extraits de lipides du tissu adipeux chez les patients sans ulcère gastrique selon l'état de CLO. (N = 30) 1
tissu abdominal
gras
acide
CLO + (N = 7)

CLO - (N = 23)
95% intervalle de confiance
valeur p

moyenne (SE)
<. br> Mean (SE)


n
-3 *
1,02 (0,065)
1,27 (0,054)
-0,469 à -0,038
0,023
C12: 0
0,34 (0,091)
0,19 (0,020)
0,026 à 0,274
0,019
C20: 0
0,16 (0,016)
0,12 (0,009)
à 0,075
0,001 0,044
C20: 4n
-6
0,32 (0,040)
0,44 (0,026)
-0,224 à -0,009
0,035
C20: 3n
-3
0,03 (0,005)
0,05 (0,004)
-0,035 à -0.001
0,037
C20: 5n
-3
0,02 (0,002)
0,04 (0,003)
-0,026 à -0.006
0,002
C22: 4
0,03 (0,002)
0,04 (0,003)
-0,023 à -0.003
0,012
C22: 5n
-3
0,11 (0,011)
0,18 (0,011)
-0,107 à -0.023
0,004
C22: 6n-3
0,10 (0,008)
0,19 (0,015)
-0,142 à -0.031
0,003 tissu
fessières
acide gras CLO + (N = 7 )
CLO - (N = 23)
95% intervalle de confiance
valeur p
moyenne (SE)
moyenne (SE)
C12: 0
0,26 (. 0,061)
0,16 (0,017)
de 0,004 à 0,186
0,042
C20: 0
0,13 (0,014)
0,09 (0,005)
0,017 à 0,065
0,001
C16: 1n
-7C
0,79 (0,048)
0,93 (0,034)
-0,268 à -0.003
0,046
C20: 1
0,44 (0,034)
0,38 (0,013)
0,003 à 0,123
0,039
C20: 3n
-6
0,20 (0,029)
0,27 (0,016)
-0,138 à -0.007
0,030
C20: 4n
-6
0,34 (0,051)
0,45 (0,026)
à 0,001
-0,217 0,050
C22: 5n
-3
0,13 (0,012)
0,18 (0,011)
-0,090 à -0.011
0,015
C22: 6n
-3
0,12 (0,013)
0,18 (0,012 )
-0,112 à -0.021
0,006
* 1 Seules les comparaisons de somme de n
-3 gras acides qui sont statistiquement significatifs au niveau de 5% sont présentés dans le tableau ci-dessus (p < 0,05)
En ce qui concerne la composition en acides gras du tissu de la fesse, il semble y avoir une relation possible avec le statut CLO chez des sujets sans ulcère gastrique.

• Optimisation de la puissance de diagnostic avec la vidange gastrique scintigraphie à de multiples points de temps
• Influence du HRH2 promoteur polymorphisme sur aberrante méthylation de l'ADN de DAPK et CDH1in le épithélium gastrique