PLoS One: rovarevő denevérek Digest kitin a gyomor savas emlős Chitinase

absztrakt katalógusa

Az emésztőrendszer állatok úgy van kialakítva, hogy az elsődleges forrása az élelmiszer, hogy optimalizálja az erőforrások és az energia-bevitel. Mérsékelt denevérfajok főként táplálkoznak ízeltlábúak. Ezek tartalmazzák az energiában gazdag szénhidrát kitin, amely nem emészthető az endogén enzimek egy tipikus emlős gyomor-bél traktusban. Azonban a gyomor-bél traktus a denevérfajok kell igazítani a diétát, és képes megemészteni kitin. Feltételeztük, hogy az (I) európai vespertilionid denevér fajok az emésztő enzim kitináz, és hogy a (II) a chitinolytic aktivitás található, a bélben, amint azt találtuk az észak-amerikai denevér faj. A gyomor-bél hét denevérfaj ( Pipistrellus pipistrellus katalógusa, Plecotus auritus katalógusa, Myotis bechsteinii katalógusa, Myotis nattereri katalógusa, Myotis daubentonii
, Myotis Myotis, katalógusa, és Nyctalus leisleri katalógusa) teszteltünk chitinolytic tevékenység diffúziós vizsgálattal. Gyomor-bél a P. pipistrellus katalógusa, P. auritus katalógusa, M. nattereri katalógusa, M. Myotis, katalógusa, és N. leisleri
vizsgáltuk savas emlős kitináz Western blot analízissel. Tissue szakaszok a gyomor-bél traktus P. pipistrellus katalógusa arra immunohisztokémiailag elemezve, a savas emlős kitináz. Chitinolytic aktivitás kimutatható volt a gyomor összes denevér faj. Western-blot-elemzés megerősítette a savas emlős kitináz a gyomorban mintákban. Immunhisztokémia A P. Pipistrellus
gyomor-bél traktus jelezte, hogy a savas emlős kitináz található, a gyomor fő sejtek a bázis a gyomor mirigyek. Összefoglalva, az európai vespertilionid denevérfajokra savas emlős kitináz, hogy az előállított, a gyomor mirigyek a gyomor. Ezért a gyomor-bél a rovarevő denevérek fejlődött enzimatikus alkalmazkodás a diéta. Katalógusa

Citation: Strobel S, Roswag A, Becker NI, Trenczek TE, Encarnação JA (2013) rovarevő denevérek Digest kitin a gyomorban használata savas emlős kitináz. PLoS ONE 8 (9): e72770. doi: 10,1371 /journal.pone.0072770 katalógusa

Vágó: François Blachier, National Institute of Research agronómiai, Franciaország katalógusa

Beérkezett: március 26, 2013; Elfogadva: július 12, 2013; Megjelent: szeptember 3, 2013 katalógusa

Copyright: © 2013 Strobel et al. Ez egy nyílt hozzáférésű cikk feltételei szerint terjeszthető a Creative Commons Nevezd meg! Licenc, amely engedélyezi a korlátlan használatát, a forgalmazás és a reprodukció bármilyen adathordozón, feltéve, hogy az eredeti szerző és a forrás jóváírásra. Katalógusa

Forrás: A szerzők nincs támogatás vagy támogatási jelenteni. katalógusa

Érdekütközés: a szerzők kijelentették, hogy nem ellentétes érdekek léteznek. katalógusa

Bevezető katalógusa

az állatok lenyelik és megemésztik élelmiszerek biztosítása folyamatos működését a belső anyagcsere lefedésével, például az energia, fehérje és vitamin követelményeknek [1]. A többlépcsős folyamat az emésztés magában mechanikai, kémiai és enzimatikus lépések konvertáló tápanyagok [2]. Denevérfajok magas tömeges fajlagos energiaigény miatt a kis méret és a képesség, hogy repülni aktívan [3], [4]. Repülő állatok, élelmiszer kell feldolgozni gyorsan csökkenti az energia iránti kereslet okozta megnövekedett repülési tömeg [2]. Európai denevérfajok egy étrend, amely elsősorban az ízeltlábúak [5]. Ezek rövid retenciós idők [6], de a magas hatékonyabbá teszi az emésztést. [7] Ez azt sugallja, hogy a gasztrointesztinális (GI) traktus erősen illeszkednek a diéta, mivel ez megemészti ízeltlábúak gyorsan és alaposan. Ezért lehet érvelni, hogy az európai denevérfajok függ ízeltlábú-specifikus emésztőenzimek. Mivel ízeltlábúak állhat akár 75% kitin (energia-tartalom 21,2 kJ /g, [8]), akkor nagyon valószínű, hogy a BAT fajok képesek megemészteni chitinous anyag, mint már kimutatták más gerincesekben, mint például a zöld gyík ( Lacerta viridis katalógusa), a Fekete rigó ( Turdus merula katalógusa), és a vörös róka ( vulpes vulpes katalógusa) [9], [10]. katalógusa

kitin is lebomlik kitinázok (EC 3.2.1.14), valamint néhány lizozimek (EC 3.2.1.17) [11], [12]. Emlősökben csak két kitinázok azonosítottak: kitotriozidáz enzim szintjét és savas emlős kitináz (AMCase) [13], mindkettő sorolják endochitinases [14]. Kitotriozidáz enzim szintjét főleg által szekretált fagociták és cselekmények ellen kitin-kórokozókat tartalmazó [15]. AMCase eddig csak azonosították egereken (Mus musculus), a makákók (Macaca fascicularis) és emberekben [16], [17]. Ez nagymértékben expresszálódik a gyomorban és a tüdő, jelezve egy kettős emésztési és immunológiai funkció [16], [17]. Chitinolytic aktivitás szintén származhatnak endogén enzimek, az elfogyasztott táplálékot jelen a gyomor-bél traktusban, vagy mikroorganizmusok által termelt enzimek [18], [19].

Chitinolytic aktivitást a GI traktusban találtak számos rovarevő denevérfajokra [8], [9]. Azonban, nincs ismeretek a megfelelő enzimet. Jeuniaux [9] igazolta chitinolytic tevékenység a tápcsatorna a Rhinolophus ferrumequinum katalógusa, az európai denevérfajok a család Rhinolophidae. Whitaker és munkatársai. [8] kimutatták chitinolytic tevékenység a tápcsatorna az észak-amerikai vespertilionid denevérfaj a nemzetségek Myotis katalógusa, Eptesicus katalógusa, nycticeius katalógusa, Lasiurus katalógusa Pipistrellus katalógusa és Lasionycteris katalógusa. Ezek izolált kitináz termelő baktériumok törzsek a bélből, mint a forrás a chitinolytic aktivitást. Ezzel szemben, a Jeuniaux [9] találtak bizonyítékot chitinolytic aktivitás a gyomor nyálkahártya a gyomor a Rhinolophus ferrumequinum
mivel a bélben nem mutat chitinolytic aktivitást. Azonban Buchholz, Wells & Conaway [20] nem találtunk kitináz- a rovarevő denevérek Pipistrellus subflavus katalógusa és Myotis grisescens katalógusa. Emellett kitinázok, néhány lizozimek képesek feloldódni kitin [11], [12]. Például, Phillips, Weiss & Tandler [21] kimutatható lizozim nyálmirigyek a rovarevő denevérek és gondolták, hogy működhetne chitinolytic enzim a nyál. Azonban lizozimek elsősorban anti-bakteriális és fontos része az immunrendszer [22], vagy az emésztés baktériumok kérődzőkben [12].

Feltételezésünk szerint az (I) európai rovarevő denevér faj a család Vespertilionidae rendelkeznek chitinolytic tevékenységet a tápcsatorna, mint ahogy azt az észak-amerikai rovarevő denevérek [8], valamint egy európai denevérfaj család Rhinolophidae [9] és (ii) a chitinolytic tevékenység található, a belekben, mint már látható észak-amerikai fajok [8]. Ebben a tanulmányban található chitinolytic aktivitást és azonosítani a megfelelő enzim AMCase alkalmazásával enzim vizsgálat, immun és immunhisztokémia. Katalógusa

Anyagok és módszerek katalógusa

Etikai nyilatkozat katalógusa

Minden személy élt ebben a vizsgálatban meghalt önkéntes rehabilitációs központokban a denevérek. Szállították őket az önkéntesek nélkül bármilyen visszatérítést. A német állatvédelmi törvény (TSchG 4.§ (3) bekezdés), valamint a szövetségi természetvédelmi törvény (alpontja §45 (4) bekezdése) nincs szükség engedélyre dolgozni tetemek. Az egér gyomor volt maradványa egy tanulmány Anatómiai Intézetének és Sejtbiológiai a Justus-Liebig-Egyetem Giessen-ben jóváhagyott, a regionális tanács (No. V54-19C20 /15C Giessen 20/23 400AZ). Állat nem ölték meg a jelen tanulmány. Katalógusa

Tissue tároló katalógusa

A hasított tárolták azonnal a halál után -20 ° C-on. Denevérek szállították jégen azaz fagyott a University of Giessen. A hasított testek tároltuk legfeljebb hat hónapig -80 ° C-on, amíg szövet előkészítése. Makro- és mikroszkópos megfigyelések igazolták a nagyon jó megőrzése szervek és sejtek készült enzimatikus és szövettani vizsgálatokat a szövetek lehetséges. Katalógusa

Tissue készítmény katalógusa

tetemeit hét rovarevő denevérek jelei nélkül rothadás ( Pipistrellus pipistrellus katalógusa ( n katalógusa = 14), Plecotus auritus katalógusa ( n katalógusa = 3), Myotis bechsteinii katalógusa ( n katalógusa = 1), Myotis nattereri katalógusa ( n katalógusa = 3), Myotis daubentonii katalógusa ( n katalógusa = 2) Myotis Myotis katalógusa ( n katalógusa = 1) és a Nyctalus leisleri katalógusa ( n katalógusa = 1)) alkalmaztunk ebben a vizsgálatban (1. táblázat) . Megnyitása után a hasfal, a GI traktust eltávolítottuk, mossuk 0,9% NaCl, és szárítjuk szűrőpapírra. A GI traktus volt osztva a nyelőcső, gyomor, duodenum, jejunum /ileum, ileum /vastagbél és a vastagbél /végbél után Ishikawa és munkatársai. [23], és lemérjük a digitális mérleg (EW2200-2NM, pontosság: 0,01 g; Kern & Sohn GmbH, Balingen, Németország). Ezen túlmenően, a gyomor egy Mus musculus katalógusa (törzs C57BL /6, fekete 6; N
= 1) alkalmaztunk pozitív kontrollként az AMCase kimutatására Western-blottal.

készítése oldható fehérje frakciók katalógusa

tápcsatorna szegmensei nem rögzített, friss példányai P. pipistrellus katalógusa ( n katalógusa = 11), P. auritus katalógusa ( n katalógusa = 3), M. bechsteinii katalógusa ( n katalógusa = 1), M. nattereri katalógusa ( n katalógusa = 3), M. daubentonii katalógusa ( n katalógusa = 2), M. myotis katalógusa ( n katalógusa = 1) és a N. leisleri katalógusa ( n katalógusa = 1), és a gyomrában M. musculus
egyenként őrölt fel egy mozsár és mozsártörő alkalmazásával extra-tiszta tengeri homok (Merck, Németország), és 0,9% NaCl (standardizált szövet mennyisége: 1 ml per 100 mg szövet). A homogenizátumokat egy éjszakán át inkubáltuk 4 ° C-on [10], majd centrifugáljuk (20 perc, 3500 g, 4 ° C). A felülúszókat -20 ° C-on, amíg a további elemzéshez.

meghatározása chitinolytic aktivitás

méréséhez chitinolytic aktivitás, agaróz gél lemezeket készítünk által leírt Zou, Nonogaki & Welbaum [24] bizonyos módosításokkal. Foszforsavval duzzasztott kitin összekeverésével állítottuk elő 10 g kitin származó rák kagyló (Roth, Németország), 100 ml 85% -os foszforsavat, és inkubáltuk 48 órán át 4 ° C-on. Ezután 2 liter hideg csapvizet adtunk hozzá, és az így kapott szűrőlepényt mossuk, amíg a pH 6,5 eléréséig [25], [26]. Agarózt (1,6%) feloldunk inkubációs pufferben (pH = 5,0) [24] egy mikrohullámú sütőben, és lehűtjük 50-60 ° C-on. Ezután a foszforsavval duzzasztott kitin (0,5%) adtunk hozzá, és 10 ml ilyen szuszpenzióhoz pipettázunk 85 mm-es Petri-csészékbe. A polimerizálás után 4 mm átmérőjű lyukakat vágtunk az agaróz és a gél darabokat eltávolítjuk egy vízsugár-szivattyút.

liofilizált por szabványos kitináz származó Serratia marcescens katalógusa (5 U; Sigma-Aldrich, Németország) oldunk 1 ml inkubációs puffert, mint a standard törzsoldat. Egy ismert koncentrációjú standard kitináz-t adunk az egyes lemezekhez, mint referencia és inkubációs puffert használtunk negatív kontrollként. Először is, a 6 ul mintát minden oldatot pipettáztunk lyukanként, majd a lemezeket inkubáltuk 20 percig szobahőmérsékleten, hogy lehetővé tegye a minták diffundálni az agar. Ezután egy további L mintát adunk az egyes lyukakhoz, és a lemezeket inkubáltuk szobahőmérsékleten 20 percen keresztül, majd 37 ° C-on 20 órán át. Agarose lemezeket ezután megfestjük 0,1% Calcofluor (Calcofluor világosító M2R; Sigma, MO, USA) 10 percig, és desztillált vízzel mossuk, 2 órán át. Litikus zóna tettük láthatóvá UV átvilágítás, majd fényképezett. Átmérőjét litikus zóna mértük GIMP (version 2.6.11; www.gimp.org). Egy referencia hígítási sorozat a kitináz törzsoldat inkubáiópuffert enzim aktivitása által kiszámított zónaátmérő versus logaritmusát a koncentráció és a variáció között lemezeket ját belső kitináz- alkalmazott szabványok az egyes Petri-csészébe. Katalógusa

Ahhoz, hogy elemezni enzimaktivitás különböző pH-értékeken, gél lemezeket készítünk, mint korábban, de különböző pH-értékeken (pH = 4,0, pH = 5,0, pH = 6,0, pH = 7,0 és pH = 8,0). A felülúszókat a gyomor, duodenum, jejunum /ileum, ileum /vastagbél és a vastagbél /végbél egyetlen személy a P. pipistrellus katalógusa használtunk. A litikus zóna tettük láthatóvá UV átvilágítás és elemzett, mint korábban. Ezen túlmenően, pH-értékek a GI traktus szakaszok öt egyének P. pipistrellus katalógusa mértük többszínű kódolt pH-papír (pH 0,0-6,0: Acilit, pontosság 0,5 pH 6,5-10,0: Speciális indikátor pontosság 0,3, Merck). katalógusa

Expression kitináz a tápcsatorna

Western blot analízissel. katalógusa

Western blot vizsgálatot végeztünk, hogy azonosítsák és biokémiai keresse kitináz- a tápcsatorna európai denevérfajok és kizárják chitinolytic tevékenység okozta lizozim. Felülúszóit szövetminta hat denevérfaj (GI traktus szakasz minták (gyomor, duodenum, jejunum /ileum, ileum /vastagbél és vastagbél /végbél): P. Pipistrellus katalógusa ( n = 2 katalógusa ) P. auritus katalógusa ( n katalógusa = 2), M. nattereri katalógusa ( n katalógusa = 1), M. Myotis katalógusa ( n katalógusa = 1) és a N. leisleri katalógusa ( n katalógusa = 1); további gyomor minták: P. pipistrellus katalógusa ( n katalógusa = 9), M. nattereri katalógusa ( n katalógusa = 1), M. daubentonii katalógusa ( n katalógusa = 2) bekezdés), valamint a gyomor egy M. musculus
használunk pozitív kontroll [27] vetettük alá nátrium-dodecil-szulfát-poliakrilamid elektroforézis (SDS-PAGE) (Laemmli [28] módosított után Sambrook, Fritsch & Maniatis [29]).

a felülúszókat az egyes 750 ug szöveti elegyítünk 01:01 2 × SDS gél-pufferrel, és melegítjük 95 ° C-on 3 percig. Az egyes minták 15 ul vetettük alá 12% -os elválasztógél és 5% dúsítógélbe. Az elektroforézist végeztünk redukáló körülmények feszültségen 100 V Az elválasztott fehérjéket elektroblottoltuk 1 órán át állandó áramerősséggel 0,8 mA /cm ^{2 PVDF membránokon. A blotokat blokkoltuk 5% zsírmentes szárított tej Tris pufferolt sóoldatban (TBS, pH = 7,5), amely 0,1% Tween 20-at (Roth) 1 órán inkubálás előtt egy nyúl poliklonális ellenanyaggal szemben az N-terminális savas kitináz ( AVIVA Systems Biology, CA, USA; hígított 1:1000 tartalmazó TBS 1% BSA), 4 ° C-on egy éjszakán át. Mosás után TBS, amely 0,05% Tween 20-at és 0,1% BSA-t, a membránokat 1 órán át inkubáltuk alkalikus foszfatázzal konjugált kecske poliklonális antitest nyúl IgG-t (H &L) (Roth, nyúl elleni-AP 4751; hígított 1:7500 TBS, amely 1% BSA). A blotokat négyszer mossuk és az antitest kötődését tettük láthatóvá inkubációval, bromochloroindoyl foszfát (Bethesda Research Laboratories, MD, USA) és nitroblue-tetrazólium szubsztrát (Biotech Trade & Service GmbH, Németország) szerint a Harlow és Lane [30].}

immunhisztokémia. katalógusa

lokalizálni AMCase sejtszinten, immunhisztokémiai analízist tápcsatorna szegmensében P. pipistrellus katalógusa ( n katalógusa = 3). A GI traktus alkatrészek fixáltuk 4% paraformaldehidet tartalmazó foszfát-pufferolt sóoldattal (pH 7,0) 24 órán előtt mostuk 4 × 1 H TBS-sel. Ezután a szövetet blokkok dehidratáltuk egy fokozatos etanol sorozat (30%, 50%, 70%, 90%, 100%), és végül paraffinba ágyaztuk. A paraffin blokkokat szakaszokra vágjuk 4-9 jim vastagságú segítségével szánkó mikrotom (Leitz, Németország) és egy éjszakán át szárítottuk. Ahhoz, hogy hozzáférhető antigén kötőhelyeket, szöveti metszeteket predigested pepszinnel (Sigma) után Goto et al. [27]. A metszeteket mossuk 0,01% Tween 20 TBS-ben. A nemspecifikus helyeket blokkoljuk 5% kecske szérummal (Merck) 3% -os BSA-val (AppliChem, Németország). A metszeteket kitéve a nyúl poliklonális antitest ellen irányuló N-terminális savas kitináz (AVIVA Systems Biology; hígított 1:200 tartalmazó TBS 1% BSA) nedves kamrában. Nincs korlátozás antitesteket mosással eltávolítjuk, TBS, mielőtt a másodlagos antitesttel (ChromeoTM 546, ABCAM, UK; hígított 1:2500 0,5% BSA TBS-ben) került alkalmazásra. A nukleáris counterstaining metszeteket 0,05% 4 ', 6-diamino-2-fenil-(DAPI) (AppliChem). Követően a végső öblítést TBS, a metszeteket 1,4-diaza-biciklo [2.2.2] oktán-oldatot (DABCO) (Sigma). Ellenőrzésére autofluoreszcencia és kötési specifitását az antitestek a metszeteket feldolgozott fluoreszcein izotiocianáttal (FITC) jelölt másodlagos antitesttel, de nem elsődleges antitesttel. A metszeteket értékeltük fluoreszcens mikroszkóppal (Olympus BX60 F-3; Olympus Optical Co. LTP, Németország). Katalógusa

Eredmények katalógusa

Chitinolytic tevékenység katalógusa

voltunk képesek észlelni chitinolytic aktivitás a gyomor mintákban minden egyén (például ábra. 1), és a vastagbél /végbél mintát egy, m. Myotis, M. nattereri katalógusa és N. leisleri katalógusa mindegyik (2. táblázat). Nem chitinolytic aktivitás mérhető a duodenum, jejunum /ileum vagy ileum /vastagbél mintákban. A chitinolytic aktivitás a gyomor mintákban volt a legmagasabb közötti pH 5,0 és pH 6,0 (ábra. 2). Támogatása a korábbi eredményeket, nem chitinolytic aktivitást kimutatni a többi régióban a tápcsatorna, függetlenül attól, hogy a pH-érték. Az átlagos pH-értéke a GI traktus P. Pipistrellus
( N
= 5) volt 5,6 ± 0,2 a gyomorban, 7,0 ± 0,3 a duodenumban, 7,1 ± 0,2 a jejunumban /ileum, 7,0 ± 0,2 az ileumban /vastagbél-és 7,0 ± 0,5 a vastagbélben /végbél.

expressziója kitináz a GI rendszerben

Western-blot-elemzés a m. musculus
gyomor mutatott karakterisztikus sáv relatív molekulatömege 46 K, jelezve a jelenlétét AMCase. Továbbá, minden gyomor minták P. pipistrellus, P. auritus, M. nattereri katalógusa, M. Myotis katalógusa, és N. leisleri
tiszta fehérje sávot 46 k azonosítottunk (reprezentatív Western blot kép, ld. a 3. Pipistrellus katalógusa és ábra. 4. Plecotus, Myotis katalógusa és Nyctalus katalógusa). Ez a fehérje sáv nem volt kimutatható a nyelőcső, a duodenum, jejunum /ileum, ileum /vastagbél vagy a vastagbél /végbél mintákat a BAT fajok (ábra. 3). Minden immunhisztokémiai eredményeket mutatott az autofluoreszcencia és nem specifikus kötődését a másodlagos FITC-kapcsolt antitest. Gyomor szakaszok volt pozitív anti-AMCase ellenanyag címkézés, míg a nyelőcső, a duodenum, jejunum /ileum, ileum /vastagbél és a vastagbél /végbél szakaszokra kötődés nem volt kimutatható. A gyomorban szakaszok, anti-AMCase címkézés korlátozódott az alján a gyomor mirigyek mentén a gyomor nyálkahártya körül DAPI-festett sejtmagok (ábra. 5).

Discussion

Feltételeztük hogy az európai rovarevő denevérek a család Vespertilionidae van emésztőenzim kitináz. Ezt a hipotézist támasztja alá a jelenléte chitinolytic aktivitás a gyomor, a vizsgált fajok. Továbbá, egy valódi kitináz, közelebbről AMCase lehetne biokémiailag azonosított valamennyi gyomor mintákban. Aktív kitinázok gyakori és megőrzött az emlősök körében [14]. Azonban a helye és funkciója a AMCase különböznek fajok, és nem teljesen megoldott [31].

Feltételezik továbbá, hogy a chitinolytic aktivitás található, a bélben, különösen a vékonybélben, mivel ez a oldal, ahol a fő enzimes emésztés és a felszívódás történik [32]. Eredményeink nem erősítették meg ezt a hipotézist, mint chitinolytic aktivitást lokalizált elsősorban a gyomorban és a három személy alacsony aktivitás szintje a vastagbélben /végbél. A nagy változékonysága chitinolytic aktivitás a vizsgált személyek által esetlegesen okozott különböző emésztési tevékenységét magánszemélyek a halál időpontjában. Ezt támasztja alá a különböző mennyiségű étel megtalálható a GI traktusban. A chitinolytic aktivitás gyomor mintákat, de nem vastagbél /végbél mintákat vezethető vissza, hogy a tevékenység a AMCase, és nem a lizozim western-blot. A tevékenység a denevér AMCase volt optimális közötti pH 5,0 és pH 6,0. Ezek pH szinten összehasonlítható a savas közeg, a gyomor rovarevő denevérek mérve a jelen tanulmány által jelentett Naumova és Zharova [33]. Ez az első jelzés a biológiai relevanciájának AMCase emésztés során ezen a részén a GI traktusban. Azonban további kísérleteket, mint az emésztési hatékonyságát próbákat kell végezni annak ellenőrzésére, hogy a tevékenység a AMCase jelent biológiai jelentősége kitin emésztést. AMCase kettős funkciója van az immunitás és az emésztés kitin tartalmú szervezetek [34], [35]. Például, az emberi AMCase nem igazodik a savas környezet a gyomorban, ellentétben a AMCase talált egerekben [31]. A gyomor AMCase a M. musculus
tartalmaz aminosavszubsztitúciót, amelyek szükségesek az adaptáció a savas miliő a gyomor [31]. Továbbá, a Boot és mtsai. [17] kimutatták, hogy a AMCase mRNS M. musculus
csak található a gyomorban. Ha ezek a aminosavszubsztitúciók vannak jelen a AMCase BAT fajok kell még látható.

Az immunhisztokémiai E vizsgálat eredményei alátámasztják a lokalizációját AMCase a gyomorban BAT fajok, különösen a gyomor mirigyek a nyálkahártya . Továbbá azt találtuk, hogy az enzimet és környékén található a fő sejtek található az alapja a gyomor mirigyek, amint korábban kimutatták, hogy a gyomor AMCase a m. musculus katalógusa [27], [31], [34]. Vezető sejtek szekretálnak emésztő enzimek [36], hogy található a számos citoplazmatikus granulumok [37]. Egy közös által termelt enzim ezen a gyomor sejttípus pepszinogén, egy prekurzora a proteolitikus enzim pepszin [38]. Goto et al. [27] kimutatták, hogy a termelés helyén gyomor AMCase a M. musculus
ezekben a szekréciós granulátumok. Ezért a legvalószínűbb, hogy AMCase is kiválasztódik a gyomor vezető sejtek denevér faj. Ez ellentétes az eredmények a Whitaker és munkatársai. [8], aki azt állította, hogy a kitináz denevérfaj termeli kitináz- termelő baktériumtörzsek (általában a Enterobacteriaceae család) a bélben. Ismeretes, hogy a bélbaktériumok termelnek kitináz hogy kielégítsék a saját táplálkozási követelményeknek [39]. Azonban kitináz termelő enterobaktériumokban is megtalálható a GI traktus emlősök, amelyek nem táplálkoznak chitinous anyaga [19]. Ez arra utal, hogy nincs szoros összefüggés kitin emésztést és chitinolytic baktériumok. Ebben a vizsgálatban az alacsony chitinolytic aktivitást mértünk a belekben az csak néhány egyén, és nem AMCase lehetett kimutatni, ha elválasztjuk a bélben a gyomorból. Ez alkalmi chitinolytic aktivitás lehet a magyarázata szállítása a AMCase termelt a gyomorból a bélbe az étellel, amint azt a Suzuki et al. [34] és a Boot et al. [17]. Továbbá, az alacsony chitinolytic aktivitást a bélben okozhatja kitináz-termelő enterobaktériumok [8]. Azonban számszerűsítése ezek a baktériumok lenne szükség, hogy ellenőrizze a részvétel kitin emésztés ezek szimbionta. Ezért valószínű, hogy a kitin a rovarevő denevérfajokra roncsoljuk kombinációja endogén gyomor AMCase és kitináz által szekretált bélbaktériumok, ahogy azt javasolták m. musculus katalógusa [17]. Ez a tanulmány egyértelműen bizonyítja, hogy az európai rovarevő denevérek a család Vespertilionidae van emésztőenzim AMCase. Megmutattuk, hogy ez az enzim aktív található, és a gyomorban, különösen, vagy bárhol a legfőbb sejtek az alapja a gyomor mirigyek. Katalógusa

Köszönetnyilvánítás katalógusa

Köszönjük E. Mühlbach, R. Keil N. Dittrich és S. Wiegand az állati minták és Y. Kühnel, C. von Bredow, A. Diebel és az emlős Ökológiai csoport a segítséget. katalógusa

• PLoS One: Sonic Hedgehog közvetíti a proliferáció és felvételi transzformált mesenchymalis őssejtek a gyomor
• PLoS One: Feltételes kifejezése Wnt9b a Six2-pozitív sejteket megzavarja Gyomor és vesefunkció